中性/碱性转化酶(Alkaline/Neutral Invertase)能不可逆地催化蔗糖分解为葡萄糖和果糖, 在植物生长发育中起重要作用。本研究采用RT-PCR和RACE技术从甘蔗品种GT28心叶中克隆到甘蔗中性/碱性转化酶基因全长cDNA序列, 基因命名为
Neutral/alkaline invertase irreversibly catalyzes sucrose into glucose and fructose, and plays an important regulating role in plant growth and development. In the present study, the whole length of neutral/alkaline invertase gene cDNA was cloned and sequenced from leaf of sugarcane variety GT28 using RT-PCR (reverse transcription-polymerase chain reaction) and RACE (rapid amplification of cDNA ends), and named as
转化酶是蔗糖代谢的关键酶, 能不可逆地催化蔗糖水解成葡萄糖和果糖, 在作物经济产量形成与果实品质改良中发挥重要作用[ 1, 2]。植物转化酶依据亚细胞定位、酶活性最适pH值不同可分为酸性转化酶和中性/碱性转化酶两个亚基因家族[ 3]。转化酶活性的缺乏是蔗糖积累的先决条件, 酶活性高于临界阈值时将不再积累高浓度的蔗糖, 主要起分解蔗糖作用[ 4]。在甘蔗成熟期, 叶片的酸性转化酶活性随甘蔗的成熟而降低; 而中性/碱性转化酶活性随甘蔗的成熟而升高, 酶活性提高有利于蔗糖的积累[ 5]。酸性转化酶是调节甘蔗蔗茎发育过程中不同节间蔗糖含量的关键酶, 是节间蔗糖积累负调节因子, 成熟茎中酸性转化酶酶活性降低有利于蔗糖的积累[ 6, 7]。转化酶在植物正常生长中的作用远远大于蔗糖合成酶[ 8]。
目前, 已从黑麦草[ 9]、小麦[ 10]、橡胶[ 11]、杨树[ 12]、水稻[ 13]等植物中克隆到中性/碱性转化酶基因。该酶是一种胞质酶, 主要存在于细胞质中, 也存在于线粒体和质体中[ 14, 15]。在线粒体中, 该酶与线粒体膜上蔗糖转运蛋白酶活性密切相关, 在调节细胞渗透压和中间产物代谢方面起着重要作用[ 16]。敲除拟南芥叶绿体 A/N-InvE基因后, 叶片中 A/N-InvE基因表达量降低, 淀粉积累量减少, 推测 A/N-InvE基因可能参与叶绿体和线粒体之间的碳循环调节[ 17]。中性/碱性转化酶基因突变体表型为短根、开花延迟、部分不育, 说明其对植物根系细胞发育和生殖发育起着重要作用[ 18, 19, 20, 21]。拟南芥 Atcyt-inv1突变体证实, Atcyt-inv1抑制侧根发育是通过控制细胞内己糖浓度实现的[ 22]
本研究采用RT-PCR和RACE-PCR技术, 从甘蔗心叶中克隆到一个全长的中性/碱性转化酶基因。同时采用染色体步移技术, 克隆该基因的上游启动子序列。用实时荧光定量PCR分析 SoNIN1在花期甘蔗不同组织部位的表达情况, 以及在盐胁迫和干旱胁迫下该基因在甘蔗根和叶中的表达情况, 以期为研究 SoNIN1在不同胁迫处理下基因的表达调控规律提供参考依据。
甘蔗品种桂糖28[ 23](GT28)由广西农业科学研究院甘蔗研究所提供。生理成熟期的甘蔗取材于广西大学农学院甘蔗资源圃新植蔗, 取材时间为2013年1月22日。采样时以蔗茎完全露出地面的节间为+1节, 依次向上类推到+31节。以顶端第一片完全展开叶为+1叶, 处于顶端中心位置还没有展开的叶为心叶。
把蔗茎砍成单芽, 在广西大学农学院甘蔗智能温室大棚进行沙土育苗的桶栽实验。当甘蔗长到2~3片真叶时, 移植于5 L的塑料桶, 每桶3株苗。采用Hoagland营养液水培, 每隔1 d换一次营养液。当甘蔗长到6~7片真叶时, 把甘蔗分成3组, 每组6桶。一组为同期对照, 另外两组分别为模拟干旱(15% PEG-6000)和盐(100 mmol L-1 NaCl)胁迫处理, 并分别于处理后0、3、6、12和24 h取样。分别取甘蔗幼根和+1叶, 用锡箔纸包好后迅速用液氮冷冻, 于-80℃保存。
RNA提取TRIzol试剂盒购于TIANGEN; RNA反转录试剂盒购于Fermentas; 5°RACE试剂盒购于Invitrogen公司; Ex Taq酶、dNTPs、pMD18-T载体、PrimeScript RT reagent Kit With gDNA Eraser、Genome Walking Kit、SYBR Premix Ex Taq II购自TaKaRa (大连), 其余试剂均为国产分析纯。本实验所用特异引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。采用ABI Stepone Plus型荧光定量PCR仪进行实时荧光定量PCR。
参照TRIzol试剂盒说明书, 以甘蔗心叶为材料提取总RNA。利用琼脂糖凝胶电泳检测总RNA完整性, 利用Thermo Scientific NaNoDrop 2000c检测总RNA浓度及纯度。按照ReverAid First Strand cDNA Synthesis Kit试剂盒说明书反转录成cDNA第1链。
1.4.1 甘蔗 SoNIN1基因中间片段的克隆 以已报道的玉米中性/碱性转化酶基因(GenBank登录号为EU955523)核苷酸序列, 运用NCBI网站上Blast程序在GenBank数据库中进行同源核苷酸序列搜索, 选取与甘蔗亲缘关系较近植物的核苷酸序列在Vector NTI Advance 11.0进行同源性比对分析, 在核苷酸序列保守性较高的地方设计1对特异引物NIZJF1和NIZJR1 (表1)。扩增体系为25 µL, 含Ex Taq酶0.25 µL、2×GC buffer II 12.5 µL、2.5 mmol L-1 dNTPs 1.5 µL、10 mmol L-1上下游引物各1 µL, 模板cDNA 1 µL、ddH2O 7.75 µL。PCR反应程序为94℃
预变性5 min; 94℃变性50 s, 56.5℃退火30 s, 72℃延伸2 min, 35个循环; 最后72℃延伸10 min。PCR产物经胶回收纯化后克隆到T载体, 转入感受态细胞DH5α中, 经PCR菌液检测后, 把含有目的片段的菌液送深圳华大基因研究院测序。
1.4.2 甘蔗 SoNIN1基因5°-RACE克隆 根据1.4.1测序获得的 SoNIN1基因中间片段核苷酸序列, 设计下游特异引物NISYF1、NISYF2和NISYF3 (表1)。由5′-Full RACE Kit (TaKaRa)试剂盒提供上游引物Outer Primer: 5′-CATGGCTACATGCTGACAGCCT A-3′和Inner Primer: 5′-CGCGGATCCACAGCCTACTG ATGATCAGTCGATG-3′。
按照5′-Full RACE Kit (TaKaRa)说明书合成cDNA模板, 做巣式PCR扩增。以外引物NISYF1和Outer Primer进行第1轮PCR扩增。PCR反应体系94℃ 5 min; 94℃ 50 s, 56℃ 30 s, 72℃ 2 min, 35个循环; 72℃延伸10 min。取第1轮PCR产物2 µL, 以内引物1 (NISYF3和Inner Primer)和内引物2 (NISYF2和Inner Primer)分别进行第2轮PCR扩增, PCR反应体系为94℃预变性5 min; 94℃变性50 s, 58.5℃退火30 s, 72℃延伸1.5 min, 35个循环; 72℃ 10 min。PCR产物经胶回收纯化后克隆到T载体, 转入感受态细胞DH5α中, 经菌液PCR检测正确后送华大测序。
1.4.3 甘蔗 SoNIN1基因3′-RACE克隆 根据1.4.1测序获得的 SoNIN1基因中间片段核苷酸序列, 设计用于3′端扩增的2条特异上游引物NIXYF1和NIXYF2、1条下游引物NIXYR1和1条反转录特异引物GZS (表1)。以提取的甘蔗心叶总RNA为模板, 按照ReverAid First Strand cDNA Synthesis Kit试剂盒说明书, 以GZS核苷酸序列作为反转录引物, 反转录合成cDNA第一链。用NIXYF1和NIXYR1引物进行第1轮PCR扩增, 将PCR产物稀释50倍后作为引物NIXYF2和NIXYR1的模板, 进行第2轮PCR扩增。PCR反应程序94℃ 5 min; 94℃ 50 s, 57℃ 30 s, 72℃ 1.30 min, 35个循环; 72℃ 10 min。产物经胶回收纯化后克隆到T载体并测序。
将1.4.1、1.4.2和1.4.3中所克隆的3个序列, 利用软件ContigExpress拼接, 获得 SoNIN1基因的全长cDNA序列, 而后在该基因的编码区设计一对引物NIF11和NIR11 (表1), 对3部分拼接结果进行PCR扩增验证。PCR扩增程序为94℃ 5 min; 94℃ 50 s, 59℃ 30 s, 72℃ 2 min, 35个循环; 72℃ 10 min。
在 SoNIN1 5′上游核苷酸序列区设计3条下游引物NINSP1、NINSP2和NINSP3 (表1), 与Genome Walking Kit试剂盒提供的上游引物AP2作巢式PCR扩增。采用改良的SDS法提取甘蔗基因组DNA[ 24]。PCR扩增体系50 μL含DNA 2 μL、2.5 mmol L-1dNTPs混合物, 8 μL、10×LA PCR buffer II (Mg2+ plus) 5 μL、5 U μL-1TaKaRa LA Taq0.5 μL、100 pmol μL-1AP2 Primer 1 μL、10 pmol μL-1 NINSP1 Primer 1 μL、ddH2O 32.5 μL。按试剂盒说明书进行PCR, 优化后第1步移PCR扩增NINSP2和AP2引物退火温度为63℃, 第2步移PCR扩增NINSP1和AP2引物温度为63.5℃, 第3步移PCR扩增NINSP3和AP2引物退火温度为65℃。
利用
树分析; 在
经华大测序中间片段PCR产物长度1131 bp (图1-A); 5′片段测序结果内引物1的PCR产物长度为769 bp (图1-B), 内引物2的PCR产物长度826 bp (图1-B), 两者经ContigExpress拼接后长度为894 bp; 3′片段扩增产物561 bp (图1-C)。三部分核苷酸序列经ContigExpress拼接后, 其cDNA序列长度2289 bp。该核苷酸序列与玉米(EU955523)、水稻(AK121301)和黑麦草(AJ003114)的中性/碱性转化酶基因核苷酸序列同源性较高, 分别是95%、86%和86%, 说明本研究克隆到的是甘蔗中性/碱性转化酶基因。
参照Murayama和Handa[ 14]对水稻中性/碱性转化酶基因的命名, 把该基因命名为 SoNIN1。在NCBI上比对分析发现已经克隆到该基因的全长cDNA序列, 包括一个1812 bp (在287~2098 bp间)的完整开放阅读框(open reading frame, ORF), 编码603个氨基酸(图2), 其中5°非编码区长度为286 bp, 3′非编码区长度为191 bp, 该基因编码蛋白与玉米(EU955523)、水稻(AK121301)、毒麦(AJ003114)、黑麦草(AM489692)、甜菜(AJ422050)、拟南芥(NM122156)中编码中性/碱
性转化酶基因编码的蛋白质同源性分别为96%、90%、87%、86%、69%和68%, 但与Bosch等[ 28]报道的甘蔗SNI蛋白质同源性仅为46%, 说明 SoNIN1是甘蔗中性/碱性转化酶基因家族的新成员。
为了验证拼接结果, 根据拼接所获得的全长cDNA序列, 在编码区两端设计一对引物NIF11和NIR11。PCR扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测, 获得1.8 kb左右的单一条带(图1-D)。该片段经华大公司测序, 获得1812 bp核苷酸片段, 该片段与拼接的编码区cDNA同源性为99.7%, 证明拼接结果正确。该基因已在DDBJ/EMBL/GenBank基因数据库注册, 注册号为JX109944。
第1轮、第2轮和第3轮染色体步移PCR扩增产物, 经1%琼脂糖凝胶电泳检测, 结果如图3所示。回收第3轮的PCR产物胶。连接pMD18 T-vector后, 经菌液PCR检测正确, 序列测序结果为1182 bp。用Blastn进行同源性比对分析, 与玉米中性/碱性转化酶基因(EU955523)核苷酸序列同源性为94%, 说明克隆到的序列是甘蔗中性/碱性转化酶基因的启动子序列, 在GenBank登录号为KC854419。用 SoNIN1cDNA的5′非编码区序列与启动子序列进行同源性比对分析, 发现二者在其同源的282个核苷酸中仅有5个碱基的差异, 说明我们克隆的序列为 SoNIN1的上游未知启动子序列, 图4黑色阴影部分为二者之间的同源序列区, 其中位于启动子ATG之前的序列为1174 bp。该启动子序列在48~ 316 bp间存在一个268 bp的非转录区, 二者的交界处符合GT-AG法, 该区域可能起诱导和增强 SoNIN1基因转录的作用。
用PlantCARE在线预测的 SoNIN1启动子区顺式调控作用元件, 将其翻译起始密码子ATG中的A
定义为+1位, SoNIN1启动子序列含有6个CAAT-box和8个TATA-box。同时还有脱落酸(motif IIb)和赤霉素(P-box)响应元件、茉莉酸甲酯(CGTCA-motif)顺式调控元件, 参与干旱诱导的MYB结合位点, 分生组织特异性激活顺式调控元件, 以及光应答元件等(表2), 表明甘蔗 SoNIN1基因的表达可能受光、脱落酸、赤霉素、茉莉酸和干旱等调控。
用SMART分析SoNIN1蛋白在116~587位氨基酸具有植物中性/碱性转化酶基因保守结构域Pfam: Invertase_neut, 属于Bac_rhamnosid亚基因家族。推测的SoNIN1蛋白质的分子量为67.79 kD、等电点为6.41。SignalP信号肽预测显示该基因不含信号肽序列。用TMHMM Server v.2.0预测该基因不含跨膜结构。TargetP 1.1 Server预测该基因可能定位于线粒体中。
利用MEGA4.0软件对甘蔗中性/碱性转化酶基因编码的蛋白与其他物种编码的蛋白进行进化树分析, 结果植物中性/碱性转化酶可分为I和II类。SoNIN1蛋白首先与单子叶禾本科植物黑麦草聚类, 其次与玉米(ACG27641.1)和水稻(BAH00419.1)聚类, 最后与拟南芥、甜菜和木薯等聚类, 在进化分支上属于I类。
以甘蔗 GAPDH为内参基因, 实时荧光定量PCR检测 SoNIN1在甘蔗植株生理成熟期不同部位的相对表达量。图6表明, SoNIN1在茎、叶、花序、花序轴和芽中都能检测到表达, 基因表达量为叶>芽>花序>茎, 而在叶中为+3叶>心叶> +6叶> +1叶; 在甘蔗不同节间的基因表达, 表现为从+1节间到+16节间基因的表达量逐渐上升, +16节间最大, 之后降低, 而在+16、+21、+31节间基因的表达量相差不大, 都略高于+1节。在花序中基因的表达量高于花序轴, 大约为其2.54倍。
在NaC胁迫处理下, SoNIN1在根、叶中的表达呈现出“低-高-低”趋势(图7), 短期内表现出先抑制后促进的趋势, 处理3 h该基因在根和叶中的表达均受到抑制, 之后逐渐升高, 处理12 h表达量达到最高; 但随着胁迫时间的延长, 处理24 h该基因在根、叶中的表达迅速降到最低水平(图7)。盐胁迫下, 该基因在根部表达较叶部高(图7)。
在15%PEG模拟干旱胁迫处理下, SoNIN1在甘蔗叶中基因的表达量在胁迫处理6 h降到最低, 12 h达到最大, 24 h降到较低水平, 但仍高于0 h 。而根中 SoNIN1基因表达量则持续地上升, 24 h维持在较高的水平, 是0 h的2.92倍。说明PEG胁迫诱导 SoNIN1基因在根、叶的表达。
本研究采用RT-PCR和RACE技术克隆到甘蔗一个中性/碱性转化酶基因, 它具有中性/碱性转化酶保守结构域Pfam: Invertase_neut。序列分析表明该基因具有完整的ORF, 所编码的蛋白与其他禾本科物种具有很高的同源性, 而与Bosch等[ 28]报道的甘蔗中性/碱性转化酶基因同源性很低, 氨基酸聚类分析表明二者都属于I类, 但在I类中又属于不同的亚类群, 说明它们是甘蔗中性/碱性转化酶家族的不同成员。
甘蔗是重要的糖料作物, 节间蔗糖含量与中性/碱性转化酶活性成负相关, 而不同节间的中性/碱性转化酶活性不同[ 29]。用荧光定量PCR法检测到 SoNIN1在花期蔗茎中基因表达量低于叶、花序和芽中的表达, 茎中 SoNIN1在转录水平上基因的表达量低, 可能有利于蔗茎中的蔗糖积累。对转甘蔗反义 SNI基因植株的研究表明, 中性/碱性转化酶酶活性受到抑制, 导致细胞内己糖含量减小而蔗糖含量增加[ 30]。通过转反义基因技术抑制中性/碱性转化酶基因的表达, 使中性/碱性转化酶蛋白合成减少, 酶活性降低, 蔗茎中己糖含量减少, 而蔗糖含量增加[ 31]。
启动子是基因表达所必需的重要DNA信号序列, 是细胞内控制基因转录与表达的时空特异性的重要因子, 可以调控基因转录表达的方向和效率, 是转录调控的中心[ 32]。本研究采用基于热不对称交错PCR原理的染色体步移技术克隆到甘蔗 SoNIN1基因启动子序列, 从转录水平上定向调控中性/碱性转化酶基因表达方向和效率, 进而探讨蔗糖代谢途径的调控。在15% PEG胁迫处理12 h后, 甘蔗根和叶中 SoNIN1表达都被诱导提高, 这与启动子序列上参与干旱诱导的MYB结合位点, 以及在受到脱落酸、赤霉素和茉莉酸甲酯等外源激素诱导时, 与启动子上相应的作用元件之间有无直接联系及其作用模式, 还需要进一步的验证。下一步我们将构建启动子序列瞬时表达载体, 在拟南芥中验证 SoNIN1基因的启动子序列的功能。
NaCl和PEG胁迫提高甘蔗 SoNIN1在根叶中的差异表达, 但对贮藏蔗糖的器官—茎的蔗糖代谢的影响和关系, 有待进一步研究。本研究中, 甘蔗中性/碱性转化酶基因的克隆及其表达分析, 不仅为中性/碱性转化酶基因家族增添了新的成员, 同时为进一步研究该基因在甘蔗蔗糖积累中作用及其功能鉴定打下了良好的基础。
从甘蔗中克隆到一个中性/碱性转化酶基因, 基因全长2289 bp, 编码603个氨基酸。具有中性/碱性转化酶基因保守结构域Pfam: Invertase_neut, N-端不含跨膜结构和信号肽序列。 SoNIN1 5°端侧翼启动子序列长1174 bp, 除了具有基因启动子的特定结构TATA-box和CAAT-b box, 还含有赤霉素、脱落酸、茉莉酸甲酯响应元件以及与干旱诱导的MYB结合位点等特异的作用元件。 SoNIN1为组成型表达, 生理成熟期表达量在甘蔗叶中最大, 芽中次之, 而在+1节间中最低。PEG胁迫和NaCl能诱导该基因在根和叶中的表达。
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