红粒小麦Tamyb10单倍型检测及其与穗发芽抗性的关系
王根平1,2,**, 毕惠惠2,**, 孙永伟2, 王成社1,*, 夏兰琴2,*
1西北农林科技大学农学院 / 旱区作物逆境生物学国家重点实验室, 陕西杨凌 712100
2中国农业科学院作物科学研究所, 北京 100081
*通讯作者(Corresponding authors): 夏兰琴, E-mail:xialanqin@caas.cn; 王成社, E-mail:wangcs2008@126.com

第一作者联系方式: E-mail:wang521wgp@163.com

** 同等贡献(Contributed equally to this work)

摘要

穗发芽是影响小麦品质和产量的重要因素之一, 通常红粒小麦比白粒小麦具有较高的穗发芽抗性。转录因子Tamyb10R-1基因的强候选基因, 其表达与否和表达水平决定小麦籽粒颜色。为阐明Tamyb10单倍型与红粒小麦穗发芽抗性的关系, 利用已开发的Tamyb10基因分子标记, 检测119份来自不同麦区的红粒小麦材料, 发现Tamyb10基因(Tamyb10-A1Tamyb10-B1Tamyb10-D1位点)可分成7类单倍型, 分别是baa、aba、bba、aab、bab、abb和bbb。Tamyb10-D1对穗发芽抗性影响最大,Tamyb10-B1次之,Tamyb10-A1作用最小。Tamyb10单倍型没有明显的地域分布特点, 但在东北春麦区,Tamyb10单倍型bbb与红粒品种的高穗发芽抗性相关。

关键词: 红粒小麦; 穗发芽; Tamyb10单倍型; 麦区
Characterization ofTamyb10Haplotypes and Their Association with Pre-harvest Sprouting Resistance in a Set of Chinese Red-grained Wheats
WANG Gen-Ping1,2,**, BI Hui-Hui2,**, SUN Yong-Wei2, WANG Cheng-She1,*, XIA Lan-Qin2,*
1College of Agronomy, Northwest A&F University / State Key Laboratory of Crop Stress Biology in Arid Areas, Shanxi Yangling 712100, China
2Institute of Crop Science, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100081, China
Abstract

Pre-harvest sprouting (PHS) is one of important factors affecting yield and quality of wheat (Triticum aestivum L.). Generally, red-grained wheat has higher PHS resistance than white wheat. Transcription factorTamyb10is a strong candidate forR-1gene and the expression of its homologues determines wheat seed coat color. In this study, we attempted to analyze the relationship betweenTamyb10 haplotype and PHS resistance using amplification result ofTamyb10specific markers and germination index (GI) evaluated in two locations over two years. In the 119 red-grain Chinese wheat varieties collected from different wheat growth zones in China, sevenTamyb10haplotypes (Tamyb10-A1,Tamyb10-B1, andTamyb10-D1locus) were detected, namely baa, aba, bba, aab, bab, abb, and bbb.Tamyb10 haplotypes were associated with GI value.Tamyb10-D1 had the greatest effect on PHS resistance, followed byTamyb10-B1 gene, andTamyb10-A1had the least effect.Tamyb10 haplotypes distribution showed no obvious regional characteristic, butTamyb10haplotype bbb correlated with high PHS resistance in the Northeast Spring Wheat Region in China.

Keyword: Red-grained wheat; Pre-harvest sprouting; Tamyb10 haplotype; Wheat growth zone in China
0 引言

穗发芽是指小麦在成熟收获期遇到阴雨或潮湿环境穗上发芽的现象[ 1, 2]。它是影响小麦生产的一种世界性灾害, 严重降低小麦品质和产量, 即使是受害轻未发芽的麦粒, 也会由于胚萌动和α-淀粉酶活性提高, 导致降落值下降, 加工品质变劣[ 3, 4]。在国际市场上, 穗发芽率超过5%的小麦即被认定为饲料麦, 价格只有粮食小麦的一半。我国北方冬麦区大部、长江中下游和西南麦区、以及东北春麦区经常遭受穗发芽危害, 提高穗发芽抗性成为我国小麦育种的重要目标之一。

小麦穗发芽是环境因素和基因型互作的结果, 环境因素包括光照、温度、湿度以及土壤环境等; 基因型因素包括穗部和籽粒性状、α-淀粉酶活性、种子休眠性和种皮颜色等[ 5, 6, 7]。对于抗穗发芽, 根据表型选择效果较差, 利用分子标记可以提高其选择效率。目前, 已开发出许多与穗发芽抗性相关的标记[ 8, 9, 10, 11]

小麦种皮颜色不仅影响面粉品质, 而且影响小麦的穗发芽抗性, 通常红粒小麦比白粒小麦具有较强的穗发芽抗性[ 12, 13]。小麦种皮颜色是由位于3A、3B、3D染色体长臂上的 R-1(red grain color gene)基因控制的。红粒小麦的种皮颜色是由类黄酮生物合成途径产生的儿茶酸、原花青素和花青素组成的, 其合成途径中主要含有查尔酮合成酶(CHS)、查尔酮异构酶(CHI)、黄烷酮3-羟化酶(F3H)和二羟基黄酮醇还原酶(DFR)[ 14]。Himi等[ 15, 16]克隆了 CHS CHI F3H DFR基因, 发现这些基因主要在红粒小麦的未成熟种皮中表达, 在白粒小麦中几乎完全被抑制。 Tamyb10基因是调控该合成途径的一个重要转录因子, 位于小麦3A、3B、3D染色体的长臂上[ 17] Tamyb10的瞬时表达可使胚芽鞘上出现红色斑点, 吸收光谱鉴定为花青素, 而 DFR在胚芽鞘中的瞬时表达, 没有红色斑点出现[ 18, 19], 进一步说明 Tamyb10基因作为转录因子调控种皮花青素合成相关基因的表达, 从而调控种皮颜色。对 T amyb10基因结构和功能的进一步分析发现, Tamyb10-A1存在3种等位变异, Tamyb10-B1 Tamyb10-D1分别存在2种等位变异, 并开发了鉴定其变异的特异分子标记[ 18]。因此, 利用该标记组合可确定小麦 Tamyb10单倍型。

目前, 小麦籽粒颜色与穗发芽抗性关系的分子机制尚不清楚, 多数红粒小麦具有穗发芽抗性, 但部分红粒小麦表现为穗发芽敏感。为了明确 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的关系, 本研究利用 Tamyb10-A1 Tamyb10- B1 Tamyb10- D1基因的特异分子标记, 探讨了中国红粒小麦的 Tamyb10单倍型及其与穗发芽抗性的相关性, 以及不同麦区中 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的关系, 为进一步解析红粒小麦穗发芽抗性机制和通过分子标记选择培育穗发芽抗性小麦品种奠定基础。

1 材料与方法
1.1 植物材料

119个红粒小麦品种来自国内不同麦区, 具有不同穗发芽抗性, 其中东北春麦区71份, 北部冬麦区30份, 长江中下游麦区10份, 西南冬麦区6份, 黄淮麦区2份。

1.2 穗发芽指数的测定及穗发芽抗性分类

采用种子发芽指数(germination index, GI)鉴定小麦穗发芽抗性[ 20]。2000—2001年和2001—2002年小麦生长季节分别于河南安阳和北京种植供试材料。在小麦蜡熟期收获麦穗, 手工脱粒, 将种子HgCl2灭菌后, 胚朝上置于铺有滤纸的培养皿中, 每皿100粒, 3次重复, 加适量无菌水, 室温下发芽。每天观察记录发芽籽粒数, 并移除发芽籽粒, 持续观察记录7 d。

式中, m为观测总天数, 本试验中 m=7; i为观测的某一天; n i为第 i天发芽种子数, N为所有实验种子数。119份材料的GI值在年份间具有高度的相关性( r = 0.898, P<0.0001), 因此采用两年两点的平均值作为一个基因型的GI观测值。按蒋国梁等[ 21]的分类标准, 119份材料的穗发芽抗性可分为抗(GI<26%)、中抗(26%≤GI<61%)和感(GI≥61%) 3种类型, 分别包括68、25和26个品种。

1.3 Tamyb10位点的分子标记检测

用植物基因DNA提取试剂盒(天根生化有限公司), 按说明书步骤从小麦种子中提取DNA。根据Himi等[ 19]报道的 myb10特异引物序列(表1), 由北京六合华大基因科技股份有限公司合成引物。PCR反应体系25 µL, 含10×buffer 2.5 µL、250 µmol L-1dNTP各2 µL、10 mmol L-1引物各0.5 µL、r Taq DNA聚合酶(大连宝生物工程有限公司) 0.2 µL、模板DNA 1 µL。反应条件为95℃预变性5 min; 95℃变性30 s, 退火30 s, 72℃延伸, 40个循环; 最后72℃延伸10 min。用1.2%琼脂糖凝胶, 在5 V cm-1电压下电泳分离PCR产物, 用0.01%EB溶液染色15 min, 用紫外成像仪照相。

由于myb10-B引物在 Tamyb10-B1a Tamyb10- B1b位点扩增片段大小相近, 采用6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳确定 Tamyb10-B基因的2种单倍型。凝胶总体积为75 mL, 其中40%聚丙烯酰胺溶液11.25 mL、尿素31.54 g、5×TBE15 mL、TEMED 45 µL、10%过硫酸铵200 µL。取PCR产物10 µL, 加入2 µL变性缓冲液后, 98℃变性10 min, 立即放入冰水混合物中。取5 µL上样, 80 W恒功率电泳约 1.5 h后, 采用银染法观察记录结果。

1.4 统计分析

按扩增结果进行单倍型分类, 采用SAS (Statistical Analysis System) 9.0软件对 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性进行相关分析, 以及麦区间的方差分析和多重比较。

表1 Tamyb10分子标记与单倍型鉴定 Table 1 Tamyb10 PCR marker and genotype identification
2 结果与分析
2.1 119个红粒小麦品种的 Tamyb10基因单倍型

Ta myb10基因在119份材料中的部分琼脂糖凝胶结果见图1, 各引物扩增片段大小与预期结果一致(表1)。 Tamyb10-A1 Tamyb10-B1 Tamyb10-D1三种基因的单倍型分布见表2

myb10-A1引物检测到91个 Tamyb10-A1b单倍 型材料; myb10-A2引物检测到28个 Tamyb10-A1a单倍型材料。供试119份材料中, myb10-A3引物扩增条带大小全为565 bp, 说明 Tamyb10-A1a只存在一种等位变异类型。在抗穗发芽的68个品种中, 有51个为 Tamyb10-A 1b单倍型, 17个为 Tamyb10-A1a单倍型; 在中抗穗发芽的25个品种中, 20个为 Tamyb10-A1b单倍型, 5个为 Tamyb10-A1a单倍型; 而在26个感穗发芽品种中, Tamyb10-A1b Tamyb10 - A1a单倍型分别为20个和6个。单倍型 Tamyb10-A1b Tamyb10-A1a品种的平均GI值没有显著差异, 说明 Tamyb10-A1基因对红粒小麦的穗发芽抗性影响较小。

图1 Myb10基因5对特异引物在部分红粒小麦品种中的扩增结果M: marker DL2000; 1: 克旱17; 2: 冀麦17; 3: 京冬1号; 4: 鉴26; 5: 川育6号; 6: 丰抗7号; 7: 京双16; 8: 北京6号; 9: 川辐1号; 10: 川麦18; 11: 平凉21; 12: 矮秆早; 13: 克旱20; 14: 吉利麦; 15: 京9428; 16: 延安11; 17: 龙辐麦5号; 18: 太原566; 19: 垦九1号; 20: 龙麦23; 21: 丰抗15; 22: 垦九10号。Fig. 1 Amplification profiles of Ta myb10 in partial red-grained wheat varieties using five pairs of specific primersM: marker DL2000; 1: Kehan 17; 2: Jimai 17; 3: Jingdong 1; 4:Jian 26; 5:Chuanyu 6; 6:Fengkang 7; 7:Jingshuang 16; 8:Beijing 6; 9:Chuanfu 1; 10: Chuanmai 18; 11: Pingliang 21; 12:Aiganzao; 13: Kehan 20; 14: Jilimai; 15: Jing 9428; 16:Yan’an 11; 17: Longfumai 5; 18: Taiyuan 566; 19: Kenjiu 1; 20: Longmai 23; 21: Fengkang 15; 22: Kenjiu 10.

表2 Tamyb10基因不同单倍型在119份材料中的分布穗发芽指数(GI)为两年两点平均值。 Table 2 Distribution of different Tamyb10 haplotypes in 119 red-grained wheat varietiesGermination index (GI) is the mean of two locations over two years.

myb10-B引物检测到67个 Tamyb10-B1b单倍型品种, 其余52个品种为 Tamyb10-B1a单倍型。 Tamyb10-B1b在抗、中抗和感穗发芽品种中的比例分别为63.2%、56.0%和38.5%; 而 Tamyb10-B1 a所占比例依次为36.8%、44.0%和61.5%。 Tamyb10-B1b单倍型的品种GI平均值为(25.1±3.7)%, T a myb10- B1a单倍型的品种GI平均值为(37.6±4.9)%, 两者存在显著差异( P<0.05), 说明 Tamyb10-B1b单倍型与穗发芽抗性相关。

myb10-D引物在119份材料中检测到98个 Tamyb10-D1b单倍型和21个 Tamyb10-D1a单倍型。 Tamyb10-D1b在抗、中抗和感穗发芽品种中的比例分别为89.8%、68.0%和76.9%, 而 Tamyb10-D1 a所占比例依次为10.3%、32.0%和61.5%。 Tamyb10-D1b Tamyb10-D1a单倍型的品种GI平均值分别为(26.9±3.2)%和(48.1±7.9)%。

2.2 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的相关性

将119份材料按照 Tamyb10-A1 Tamyb10-B1 Tamyb10-D1的单倍型(见附表)分成7类, 即baa、aba、bba、aab、bab、abb、bbb。对单倍型与穗发芽抗性的方差分析和多重比较分析发现, 单倍型baa与aab、baa与bbb穗发芽抗性差异极显著( P<0.01), baa与bba、baa与abb、aba与bbb穗发芽抗性差异显著( P<0.05)(表3)。由此推测, Tamyb10单倍型与穗发芽抗性具有相关性。其中, 单倍型bbb和aab具有较低的穗发芽率, 平均穗发芽率分别为(18.1±4.2)%和(20.5±8.0)%。因此, 这2种 Tamyb10单倍型可作为红粒小麦抗穗发芽品种的优选基因型加以利用。在A、B和D组同源基因中, Tamyb10-D1基因可能对穗发芽抗性具有较大的影响, 其次是 Tamyb10-B1, 作用最小的是 Tamyb10-A1, 特别是 Tamyb10-D1b对提高小麦穗发芽抗性起重要作用。

表3 不同 Tamyb10单倍型的穗发芽指数(GI) Table 3 Germination index (GI) in different Tamyb10haplotypes
2.3 不同生态麦区 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的相关性

71份东北春麦区品种中, 存在6种单倍型, 未出现baa单倍型, 仅aba单倍型品种感穗发芽, 其余为抗穗发芽品种, 占98.6%, 其中, bbb单倍型占45.0%。在30份北部冬麦区品种中, 存在7种单倍型, 且全为感穗发芽品种。 Tamyb10单倍型在该地区与穗发芽率抗性的关系较小。在10份长江中下游麦区品种中, aba、abb、bab、bba、bbb单倍型都为中抗穗发芽品种, 未出现aab和baa单倍型。西南冬麦区的6份品种包含4种单倍型, 平均穗发芽率均为中抗水平。黄淮麦区2个品种分别为bba和bbb单倍型, 平均为中抗穗发芽(表4)。

表4 不同麦区的 Tamyb10单倍型及其品种平均穗发芽指数(GI) Table 4 Tamyb10haplotypes in different wheat region and their average germination index of varieties correlation analysis between PHS and haplotypes distribution across six wheat growth zones
3 讨论

红粒小麦普遍具有穗发芽抗性, 可能是控制种皮颜色基因的多效性造成的[ 12, 22, 23]。细胞遗传学方法证明, 麦粒颜色由位于小麦第3同源群长臂上的3个 R显性基因 R-A1b R-B1b R-D1b控制, R-1基因可以上调类黄酮合成途径中粒色相关基因的表达[ 24] R-1基因与种子休眠性也密切相关, 可增强种子的休眠性[ 23] R-1基因以一种转录因子的形式参与粒色的调控, 并且 Tamyb10基因与 R-1基因在控制籽粒的颜色方面具有相同的功能, Tamyb10 R-1基因的一个强候选基因[ 19]

本文利用 Tamyb10基因分子标记检测了119份来自不同麦区红粒小麦的 Tamyb10单倍型, 共发现 7种单倍型, 即baa、aba、bba、aab、bab、abb和bbb, 未发现aaa单倍型。因为当 Tamyb10位点3个同源基因全表现为隐性单倍型(aaa)时, 种皮颜色为白色, 反之任何一个位点出现显性等位基因时种皮表现红色[ 25]

目前, 小麦籽粒颜色与穗发芽抗性关系的分子机制尚不清楚。因此, 了解籽粒颜色合成相关基因的功能和作用机制, 将有助于解析红粒小麦穗发芽抗性机制。 TaDFR基因是类黄酮合成途径中控制籽粒颜色生成的一个关键基因, Tamyb10转录因子可以调控该基因的表达。本实验室分析了不同穗发芽抗性红粒小麦中 TaDFR基因的等位变异类型, 发现 TaDFR-A TaDFR-D无功能差异或等位变异, 而 TaDFR-B存在3种等位变异, 与 TaDFR- Ba相比, TaDFR- Bb在启动子区有一个8 bp插入, TaDFR- Bc存在一个SNP差异点; 在120份红粒小麦材料中, 启动子区含有8 bp插入序列的品种( TaDFR- Bb)具有较高穗发芽抗性( P<0.01)[ 18]。推测该8 bp的插入可能影响 Tamyb10转录因子与 TaDFR- Bb启动子的结合效率, 导致表达上的差异, 最终影响红粒小麦穗发芽抗性。本研究表明, 不同 Tamyb10单倍型材料的平均穗发芽率存在差异, 其中单倍型bbb和单倍型aab具有较低的穗发芽率, 与其他5种单倍型间存在显著差异, 说明 Tamyb10单倍型与穗发芽率相关。同时发现, Tamyb10- D1b对提高小麦穗发芽抗性起重要作用。就 Tamyb10-D1的2种单倍型来说, Tamyb10-D1b Tamyb10- D1a单倍型材料的平均穗发芽率无显著差异, 但综合分析 Tamyb10位点3个同源基因的效应, Tamyb10-D1对穗发芽率的影响最大, 可能与基因间互作有关。

各生态麦区中, 东北春麦区(71份)和北部冬麦区(30份)品种数较多, 对其进行单倍型地理分布分析, 但未发现明显的地域性特征, 东北春麦区红粒小麦品种中存在6种单倍型, 无baa型, 而北部冬麦区红粒小麦品种中则存在7种单倍型。与此相反 Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的关系在不同地域存在一定差异, 例如在71个东北春麦区品种中, 81.7%的抗穗发芽品种的单倍型是aab、bab或bbb, 其中bbb型占45.0%, 表明该单倍型在东北春麦区的小麦抗穗发芽育种中起重要作用。而在北部和长江中下游(40份材料)的冬小麦种植地区, 这3种单倍型的材料却表现为感穗发芽或中抗穗发芽。说明在北部和长江中下游的冬小麦种植地区, 红粒小麦穗发芽抗性育种可能主要针对其他穗发芽抗性性状, 例如, 穗部和籽粒性状、α-淀粉酶活性和种子休眠性等。此外, 由于受不同麦区中所分析的小麦品种数量限制和分布不平衡的影响, Tamyb10单倍型与穗发芽抗性的关系在地域间的分布特征还有待进一步研究。

4 结论

利用 Tamyb10分子标记, 确定了119份中国红粒小麦的 Tamyb10单倍型, 发现 Tamyb10基因在中国红粒小麦品种中存在7种不同的单倍型, 且不同单倍型间材料的平均穗发芽率存在差异。bbb和aab单倍型与较高穗发芽抗性相关, 可作为小麦抗穗发芽品种的优选基因型加以利用。 Tamyb10-D1基因对穗发芽抗性的影响大于 Tamyb10-B1 Tamyb10-A1 Tamyb10单倍型bbb在东北春麦区与较高穗发芽抗性相关。

附表
附表 119份中国红粒小麦材料的GI值和 Tamyb10单倍型 Supplemental Table GI values and Tamyb10 haplotypes in 119 Chinese red-grained wheat varieties
(附表) 119份中国红粒小麦材料的GI值和 Tamyb10单倍型 Supplemental Table Table GI values and Tamyb10 haplotypes in 119 Chinese red-grained wheat varieties
(附表) 119份中国红粒小麦材料的GI值和 Tamyb10单倍型 Supplemental Table Table GI values and Tamyb10 haplotypes in 119 Chinese red-grained wheat varieties
(附表) 119份中国红粒小麦材料的GI值和 Tamyb10单倍型 Supplemental Table Table GI values and Tamyb10 haplotypes in 119 Chinese red-grained wheat varieties

致谢: 衷心感谢肖世和研究员、闫长生副研究员等提供的穗发芽抗性数据。

The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。The authors have declared that no competing interests exist.

参考文献
[1] Bewley J D. Seed germination and dormancy. Plant Cell, 1997, 9: 1055-1066 [本文引用:1] [JCR: 9.251]
[2] Lenton J R. Opportunities for the manipulation of development of temperate cereals. Adv Bot Res, 2001, 34: 127-164 [本文引用:1] [JCR: 2.292]
[3] Humphreys D G, Noll J. Methods for characterization of preharvest sprouting resistance in a wheat breeding program. Euphytica, 2002, 126: 61-65 [本文引用:1] [JCR: 1.643]
[4] Gale M D, Lenton J R. Preharvest sprouting in wheat: a complex genetic and physiological problem affecting bread making quality in UK wheat. Asp Appl Biol, 1987, 15: 115-124 [本文引用:1]
[5] 孙果忠, 闫长生, 肖世和. 小麦穗发芽机制研究进展. 中国农业科技导报, 2003, 5(6): 13-18
Sun G Z, Yan C S, Xiao S H. The Mechanism on wheat pre-harvest sprouting. J AgricSci Tech, 2003, 5(6): 13-18 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1] [CJCR: 0.4353]
[6] Gale M D, Flintham J E, Arthur E D. Alpha-amylase , 1983. pp29-35 [本文引用:1]
[7] Adkins S W, Bellairs S M, Loch D S. Seed dormancy mechanisms in warm season grass species. Euphytica, 2002, 126: 13-20 [本文引用:1] [JCR: 1.643]
[8] Mares D, Mrva K, Cheong J, Williams K, Watson B, Storlie E, Sutherland M, Zou Y. A QTL located on chromosome 4A associated with dormancy in white-and red-grained wheats of diverse origin. TheorAppl Genet, 2005, 111: 1357-1364 [本文引用:1] [JCR: 3.658]
[9] Kulwal P L, Kumar N, Gaur A, Khurana P, Khurana J P, Tyagi A K, Balyan H S, Gupta P K. Mapping of a major QTL for pre-harvest sprouting tolerance on chromosome 3A in bread wheat. TheorAppl Genet, 2005, 111: 1052-1059 [本文引用:1] [JCR: 3.658]
[10] Yang Y, Zhang C L, Liu S X, Sun Y Q, Meng J Y, Xia L Q. Characterization of the rich haplotypes of Viviparous-1A in Chinese wheats and development of a novel sequence-tagged site marker for pre-harvest sprouting resistance. Mol Breed, 2014, 33: 75-88 [本文引用:1] [JCR: 3.251]
[11] Yang Y, Zhao X L, Xia L Q, Chen X M, Xia X C, Yu Z, He Z H, Röder M. Development and validation of a Viviparous-1 STS marker for pre-harvest sprouting tolerance in Chinese wheats. TheorAppl Genet, 2007, 115: 971-980 [本文引用:1] [JCR: 3.658]
[12] Warner R L, Kudrna D A, Spaeth S C, Jones S S. Dormancy in white-grain mutants of Chinese Spring wheat (Triticum aestivum L. ). Seed Sci Res, 2000, 10: 51-60 [本文引用:2] [JCR: 1.931]
[13] 胡汉桥, 王罡, 张艳贞, 张领兵, 杜娟. 春小麦穗发芽抗性鉴定及机理研究. 麦类作物学报, 2001, 21(3): 13-17
Hu H Q, Wang G, Zhang Y Z, Zhang L B, Du J. The resistance and mechanism of pre harvest sprouting in spring wheat. J Triticeae Crops, 2001, 21(3): 13-17 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[14] Holton T A, Cornish E C. Genetics and biochemistry of anthocyanin biosynthesis. Plant Cell, 1995, 7: 1071-1083 [本文引用:1] [JCR: 9.251]
[15] Himi E, Noda K. Isolation and location of three homoeologous dihydroflavonol-4-reductase (DFR) genes of wheat and their tissue-dependent expression. J Exp Bot, 2004, 55: 365-375 [本文引用:1] [JCR: 5.242]
[16] Himi E, Nisar A, Noda K. Colour genes (R and Rc) for grain and coleoptile upregulate flavonoid biosynthesis genes in wheat. Genome, 2005, 48: 747-754 [本文引用:1]
[17] Himi E, Noda K. Red grain colour gene (R) of wheat is a Myb-type transcription factor. Euphytica, 2005, 143: 239-242 [本文引用:1] [JCR: 1.643]
[18] Bi H H, Sun Y W, Xiao Y G, Xia L Q. Characterization of DFR allelic variations and their associations with pre-harvest sprouting resistance in a set of red-grained Chinesewheat germplasm. Euphytica, 2014, 195: 197-207 [本文引用:3]
[19] Himi E, Maekawa M, Miura H, Noda K. Development of PCR markers for Tamyb10 related to R-1, red grain color gene in wheat. Theor Appl Genet, 2011, 122: 1561-1576 [本文引用:3] [JCR: 3.658]
[20] Walker Simmons M. Enhancement of ABA responsiveness in wheat embryos by high temperature. PlantCell & Environ, 1988, 11: 769-775 [本文引用:1] [JCR: 31.957]
[21] 蒋国梁, 吴兆苏. 小麦穗发芽抗性鉴定与白粒抗源的筛选. 上海农业学报, 1992, 8(3): 9-14
Jiang G L, Wu Z S. Preliminary report on determining seed germinability in spikes and selecting white-kerneled germplasm resources with sprouting resistance in Triticum aestivum. ActaAgric Shanghai, 1992, 8(3): 9-14 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[22] Flintham J E. Different genetic components control coat-imposed and embryo-imposed dormancy in wheat. Seed Sci Res, 2000, 10: 43-56 [本文引用:1] [JCR: 1.931]
[23] Himi E, Mares D J, Yanagisawa A, Noda K. Effect of grain colour gene (R) on grain dormancy and sensitivity of the embryo to abscisic acid (ABA) in wheat. J Exp Bot, 2002, 53: 1569-1574 [本文引用:2] [JCR: 5.242]
[24] Mcintosh R A, Hart G E, Gale M D. Catalogue of gene symbols for wheat: 1990 supplement. Cereal Res Commun, 1990, 18: 141-157 [本文引用:1] [JCR: 0.549]
[25] 陈杰, 陈锋, 詹克慧, 刘宝龙, 崔党群. 普通小麦籽粒Tamyb10基因等位变异的分子检测. 麦类作物学报, 2013, 33: 224-229
Chen J, Chen F, Zhan K H, Liu B L, Cui D Q. Allelic variations of Tamyb10 gene controlling grain color of bread wheat (Triticum aestimum L. ). J Triticeae Crops, 2013, 33: 224-229 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]