中麦175 (软质麦)和中优206 (硬质麦)用于体系建立, 2011— 2012年度种植于北京。20份冬小麦品种用于UPLC与HPLC方法比较, 其中北部冬麦区品种6个, 包括晋麦61、晋麦67、京冬8号、CA9719、CA9722和京9428; 黄淮麦区品种12个, 包括晋麦45、烟农18、烟优361、鲁麦23、高优503、豫麦50、85中33、兰考24、豫麦49、豫麦63、皖麦19和皖麦38; 长江中下游麦区品种2个, 包括徐州25和扬麦158。这20份品种于2011— 2012年度分别种植于北京、河南安阳和安徽濉溪, 没有发生穗发芽, 收获后将籽粒自然晒干, 低温贮藏。

用Perten Instruments North America公司(Reno, NV, Sweden)生产的4100型单籽粒谷物特性测试仪(Single Kernel Characterization System, SKCS)测定籽粒硬度和水分含量。用Brabender Quandrmat Junior (Brabender Inc., Duisberg, Germany)磨, 按AACC 26-50 (1995)方法润麦和制粉。为避免色素被一些酶类氧化, 将面粉储存于18℃暗光环境。

谷物中类胡萝卜素主要有玉米黄质、叶黄素、α -胡萝卜素和β -胡萝卜素^[26]。叶黄素(纯度≥ 90%)、玉米黄质(纯度≥ 95%)和β -胡萝卜素(纯度≥ 95%)标样购自Sigma公司, α -胡萝卜素(纯度≥ 97%)标样购自CaroteNature公司。

叶黄素、玉米黄质、α -胡萝卜素和β -胡萝卜素的固体标准样品先用四氢呋喃彻底溶解, 再用甲醇稀释获得0.1 mg mL^-1叶黄素、0.1 mg mL^-1玉米黄质、0.1 mg mL^-1 α -胡萝卜素和0.05 mg mL^-1 β -胡萝卜素标准溶液, 叶黄素、玉米黄质、α -胡萝卜素和β -胡萝卜素按体积比为8∶ 2∶ 4∶ 6配置成混合标准样品。利用HPLC和UPLC对4种单组分标样和混合标样进行分析, 根据单组分标准样品的保留时间, 确定混合标样中各组分。将配好的混合标准样品用甲醇稀释为原浓度的1/2、1/4、1/8、1/10, 制作标准曲线, 峰面积为纵坐标, 样品浓度为横坐标。

从提取类胡萝卜素的常用溶剂中选取5种混合溶剂, 其成分组成和比例(v/v)分别是正己烷∶ 丙酮(80∶ 20)、丙酮∶ 甲醇(70∶ 30)、丙酮∶ 石油醚(50∶ 50)、甲醇∶ 四氢呋喃(50∶ 50)和甲醇∶ 二氯甲烷(45∶ 55)。混合溶剂中加入0.1%的抗氧化剂――丁羟甲苯(butylated hydroxytoluene, BHT)。

用超声波法提取时, 先准确称取8.0 g面粉, 置于三角瓶中, 加入40 mL样品提取液, 漩涡振荡2 min, 然后放入KQ-500DB数控超声清洗器中, 在20℃、100 Hz条件下超声提取1 h。然后, 将上清液转移到50 mL塑料离心管中, 23 500 × g离心15 min; 上清液过0.45 μ m的油性滤膜后转入液相小瓶中。

用恒温振荡法提取时, 先称取8.00 g小麦面粉, 加入40 mL样品提取液, 漩涡振荡2 min, 再于35℃恒温振荡器中300转 min^-1振荡1 h; 然后将上清液转移到50 mL塑料离心管中, 23 500 × g条件下离心15 min; 将上清液转移到100 mL烧杯中, 用TTL-DCII型氮吹仪(北京同泰联公司)将溶剂吹干, 所得残渣即为类胡萝卜素。再用1.5 mL含0.1% BHT的甲醇∶ 乙酸乙酯(68∶ 32, v/v)溶解, 置于2 mL棕色离心管中, 在分析使用之前置于-20℃条件下保存, 经4℃条件下15 000 × g离心20 min后, 取上清液过0.22 μ m油性滤膜至进样小瓶中, 进样量为8 μ L。所有提取样品需在24 h内完成分析。

1.4.1 HPLC法 流动相A为乙腈∶ 甲醇∶ 三乙胺(85∶ 15∶ 0.05, v/v/v), 流动相B为甲醇∶ 乙酸乙酯∶ 三乙胺(68∶ 32∶ 0.05, v/v/v), 配制的流动相应以0.45 μ m油性滤膜过滤, 流动相使用前超声脱气20 min。洗脱梯度为0 min时100%流动相A, 5 min 时100%流动相A, 45 min时0%流动相A, 55 min时100%流动相A。胡萝卜素分析专用色谱柱YMC C30 (4.6 mm × 250.0 mm, 粒径5 μ m), 流速为1.0 mL min^-1, 检测波长450 nm。HPLC色谱系统为Waters 2695, 利用工作站软件Millennium 32, 根据标准样品的保留时间判断样品中类胡萝卜素的组分。

1.4.2 UPLC法 流动相A为乙腈∶ 甲醇∶ 水∶ 三乙胺=81∶ 14∶ 5∶ 0.05 (v/v/v/v), 流动相B为甲醇∶ 乙酸乙酯∶ 三乙胺 = 68∶ 32∶ 0.05 (v/v/v), 配制的流动相应以0.22 μ m油性滤膜过滤, 流动相在使用前超声脱气20 min。洗脱梯度为0 min时100%流动相A, 0.3 min时100%流动相A, 12 min时0%流动相A, 20 min时0%流动相A, 22 min时100%流动相A, 25 min时100%流动相A。YMC C30胡萝卜素分析专用色谱柱(高100 mm, 直径4.6 mm, 粒径3 μ m), 流速为0.4 mL min^-1, PDA检测波长450 nm。UPLC色谱系统为Waters Acquity系统, 利用工作站软件Empower Pro (version 2.0), 根据标准样品的保留时间判断样品中类胡萝卜素的组分, 并采用不同浓度的混合标准样品与对应的峰面积值间的关系制作标准曲线(R² > 0.9990), 采用自动积分获取样品的峰面积, 再根据标准曲线计算样品相关组分含量。

用Statistical Analysis System (SAS9.1)进行基本统计量分析和差异显著性比较。

选择5种类胡萝卜素提取溶液(均含0.1%的BHT), 分别提取中麦175和中优206面粉样本的类胡萝卜素, 用叶黄素含量来判断提取效果。结果表明, 正己烷∶ 丙酮(80∶ 20, v/v)的提取效果最好, 而另4种提取方法没有显著差异。因此, 本试验选用正己烷∶ 丙酮(80∶ 20, v/v)作为小麦类胡萝卜素的提取溶剂(表1)。

表1

Table 1

表1(Table 1)

表1 不同提取液提取小麦样品叶黄素含量比较 Table 1 Lutein contents in samples using different solvents 溶剂成分 Solvent component 比例 Ratio (v/v) 中麦175 Zhongma 175 中优206 Zhongyou 206 正己烷∶ 丙酮 n-Hexane:acetone 80:20 61.6± 1.5 a 75.3± 1.9 a 丙酮∶ 甲醇 Acetone:methanol 70:30 60.2± 2.2 a 76.7± 1.9 a 丙酮∶ 石油醚 Acetone:petroleum ether 50:50 57.8± 3.3 a 71.2± 4.1 a 甲醇∶ 四氢呋喃 Methanol:tetrahydrofuran 50:50 56.8± 1.2 a 70.9± 4.1 a 甲醇∶ 二氯甲烷 Methanol:dichloromethane 45:55 32.5± 2.1 b 40.6± 8.3 b Data (μ g in 100 g flour) are the means ± SD of two replicates. Different letters after SD indicate significant difference among solvents (P < 0.05). 数据2次重复的平均值± 标准差, 以100 g面粉中叶黄素的质量(μ g)为单位。标准差后不同小写字母表示不同提取液间有显著差异(P < 0.05)。

表1 不同提取液提取小麦样品叶黄素含量比较 Table 1 Lutein contents in samples using different solvents

比较超声和恒温振荡两种常用方法的提取效果, 可以看出, 两种对中麦175面粉中叶黄素提取量的影响差异不显著, 而对中优206面粉叶黄素提取量有显著影响(P< 0.05); 从提取量看, 恒温振荡法在2个品种提取到的叶黄素含量均高于超声法。同时, 恒温振荡法对温度控制较稳定, 而超声法中水温会逐渐升高, 降低了样品间提取条件的重复性。因此, 本文最终选用恒温振荡法作为小麦类胡萝卜素的提取方法(表2)。

表2

Table 2

表2(Table 2)

表2 不同提取方法提取小麦样品叶黄素含量比较 Table 2 Lutein contents in samples using different methods 方法 Method 参数 Parameter 中麦175 Zhongmai 175 中优206 Zhongyou 206 超声法 Sonication 100 Hz, 1 h, 20℃ 48.6± 0.6 a 70.0± 0.9 b 恒温振荡法 Oscillation 300 r min-1, 1 h, 35℃ 55.4± 4.2 a 77.2± 1.6 a Data (μ g in 100 g flour) are the means ± SD of two replicates. Different letters followed SD indicate significant difference between methods (P < 0.05). 数据2次重复的平均值± 标准差, 以100 g面粉中叶黄素的质量(μ g)为单位。标准差后不同小写字母表示两种方法之间有显著差异(P < 0.05)。

表2 不同提取方法提取小麦样品叶黄素含量比较 Table 2 Lutein contents in samples using different methods

根据类胡萝卜素4种组分(叶黄素、玉米黄质、α -胡萝卜素和β -胡萝卜素)单个标准样品的保留时间确定混合标准样品的保留时间, 如图1所示, 各组分的保留时间可明显区分, 其中叶黄素的保留时间为12.173 min, 玉米黄质为13.203 min, α -胡萝卜素为18.472 min, β -胡萝卜素为20.836 min。在检测4种组分时, 没有检测到α -胡萝卜素, 玉米黄质和β -胡萝卜素分离出的峰形小且响应值较低。

图1

Fig. 1

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	图1 样品中叶黄素(a)、玉米黄质(b)、α -胡萝卜素(c)和β -胡萝卜素(d)的UPLC峰形图 A: 标准样品; B: 小麦样品。Fig. 1 UPLC chromatograms of lutein (a), zeaxanthin (b), α -carotene (c), and β -carotene (d) A: mixed standard; B: bread wheat.

对制作标准曲线的5种不同浓度的标准样品连续进样进行测定, 检测到的峰形从左到右依次为叶黄素、玉米黄质、α -胡萝卜素、β -胡萝卜素(图2)。可以看出, 类胡萝卜素的4种组分在UPLC洗脱梯度下保留时间重复性相对稳定。加样回收率, 叶黄素为92.3%, 玉米黄质为94.8%, β -胡萝卜素为51.0%, 3种组分总量为85.9%。为了便于观察提取及分离量化的稳定性, 在多样品分析中需增加对照样品, 每20个样品增加一个对照。根据对照样品中测定的类胡萝卜素各组分峰形图的保留时间及含量的分析, 判断系统的稳定性及检测的准确性, 从而保证所有样品测定结果的一致性。

图2

Fig. 2

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	图2 连续5次进标准样品峰形图 A: 堆栈图; B:叠加图。Fig. 2 Consecutive UPLC separations of carotenoids standards in calibration curves with optimized conditions A: consecutive runs of five carotenoids standards; B: overlapping of five carotenoids standards in consecutive runs.

选取晋麦61等20份小麦品种, 分别利用UPLC体系与HPLC体系测定其面粉叶黄素含量, 两种方法的决定系数为0.96 (图3), 说明本研究建立的UPLC方法用于小麦类胡萝卜素组分含量测定可行。HPLC体系对玉米黄质和β -胡萝卜素无法进行定量分析, 而UPLC体系则可以将这两种组分分离并定量。因此, UPLC方法具有分析通量高、检测灵敏度高的特点, 与HPLC相比, 还提高了叶黄素与玉米黄质的分离度。

图3

Fig. 3

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	图3 UPLC体系与HPLC体系提取类胡萝卜素相关性分析Fig. 3 Correlation between lutein contents in wheat flour extracts from UPLC and HPLC systems

普通小麦类胡萝卜素各组分定量研究尚无统一提取方法, 以水饱和正丁醇提取法较为常用^{[28, 29]}, 但所使用的有机溶剂— — 水饱和正丁醇与UPLC体系中使用的流动相不兼容, 且该溶剂黏度大, 氮气吹干过程时间很长, 因此, 本研究建立了能够适应UPLC检测体系并能大批量提取小麦类胡萝卜素的方法。Burkhardt和Bö hm ^[30]曾使用甲醇和四氢呋喃混合液提取硬粒小麦类胡萝卜素, 但我们发现该方法的提取效果不及丙酮与甲醇混合液和正己烷与丙酮混合液。Oliver等^[31]还使用过皂化方法进行提取类胡萝卜素, 但提取时间长, 且可能破坏类胡萝卜素的结构。Hung和Hatcher^[25]用水饱和正丁醇作为提取溶剂, 需在黑暗环境下过夜提取; 与之相比, 本研究的提取过程更短、效率较高、重复性好, 两次提取相关性为0.99, 因此认为, 该方法可用于提取普通小麦类胡萝卜素。

利用HPLC体系测定小麦籽粒中类胡萝卜素含量, 单个样品所用时间约为60 min ^{[30, 32, 33, 34]}, UPLC体系测定类胡萝卜素的分离度、测定速度和灵敏度更高, 本文中的UPLC测定体系检测时间仅为25 min。HPLC体系进样量为50 μ L, 而UPLC仅为8 μ L, 用量减少约80%。同时HPLC法每针进样所需流动相总用量约为60 mL, 而UPLC法仅需约10 mL, 约为HPLC法的1/6。通过计算加样回收率, 该体系对叶黄素和玉米黄质的回收率较高, 达到90%以上, 但对于β -胡萝卜素回收率相对较低, 这是由于β -胡萝卜素极不稳定, 在样品处理和分离过程中都会有一定损失。

色谱柱是液相色谱分离分析的关键硬件^[35], 本研究选用YMC C30胡萝卜素分析专用色谱柱, 与传统的C18色谱柱比, 它提供了足够的相位厚度, 可增强与长链分子之间的相互作用, 利于分离双键键合系统的异构体。叶黄素与玉米黄质为同分异构体, 区别仅在一个双键位置的不同, 因此使用YMC C30胡萝卜素分析色谱柱能将两者很好分离。

本研究中, UPLC法使用是高100 mm、直径4.6 mm、粒径3 μ m的色谱柱, 一般认为粒径低于2 μ m的小颗粒作为固定相, 可以增加色谱柱的效能, 提高分离度。但小颗粒不仅要求系统能承受高于目前极限压力(6000 psi/400 bar), 更小的死体积, 并且能适应只有几秒峰宽的高速检测器。目前尚无用于检测类胡萝卜素的固定相粒径更小的色谱柱, 我们曾使用现有的小颗粒填充的UPLC色谱柱(ACQUITY UPLC BEH C18 2.1 mm × 100.0 mm, 粒径1.7 μ m), 但并不能很好分离叶黄素和玉米黄质两种组分, 且β -胡萝卜素出峰时间比较靠后, 所以最终选用了粒径为3 μ m的YMC C30胡萝卜素专用分析色谱柱。在本试验中, 实际小麦样品β -胡萝卜素保留时间较之标准样品有些提前, 不过在误差范围内, 这是由于有机溶剂直接提取得到的类胡萝卜素中会有杂质影响。随着技术的发展以及UPLC使用的普及, 若未来能设计一款专门测定类胡萝卜素的固定相粒径小于2 μ m的色谱柱, 可更有效分析研究植物中类胡萝卜素。

流动相可影响相关组分的分离效果, UPLC体系的流动相与HPLC体系流动相组分相同, 只是在流动相A中加入5%纯水, 目的是在超高压的环境下, 减少流动相的黏度。Hung和Hatcher ^[25]利用UPLC方法测定硬粒小麦类胡萝卜素, 洗脱时间为6 min, 但只检测到叶黄素与β -胡萝卜素, 且根据Kean等^[36]的研究推测色谱图中的玉米黄质色谱峰, 并没有利用标准样品或是质谱检测到玉米黄质。本研究可以将4种组分分离, 但多次进样之后, β -胡萝卜素的保留时间会延后, 这是由于类胡萝卜素的提取过程相对简单, 而UPLC对样品的前处理要求较高, 会因一些杂质残留而使出峰时间延后。经过多次试验, 最终选定25 min的洗脱时间, 保证在最短的时间内更稳定地测定类胡萝卜素组分。