引用本文
樊艳平, 张耀文, 赵雪英, 张仙红. 抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性及理化性质.作物学报, 2017, 43(11):1696-1704
FAN Yan-Ping, ZHANG Yao-Wen, ZHAO Xue-Ying, ZHANG Xian-Hong. Activity and Physico Chemical Properties of Trypsin Inhibitor in Bruchid- Resistant Mung Bean. Acta Agronomica Sinica, 2017, 43(11):1696-1704  
Doi:10.3724/SP.J.1006.2017.01696
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抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性及理化性质
樊艳平1, 张耀文2, 赵雪英2, 张仙红1,*
1山西农业大学农学院, 山西太谷030801
2山西省农业科学院作物科学研究所, 山西太原030000
*通讯作者(Corresponding author):张仙红, E-mail:zxh6288@sina.com

第一作者联系方式:E-mail:ndxxxy@126.com, Tel:13485360715

收稿日期:2017-07-23
基金:本研究由国家现代农业产业技术体系建设专项(GARS-08-G11)资助
摘要

以4个抗豆象绿豆品系B18、B20、B24和A22为试材, 以感虫绿豆品种晋绿1号为对照, 研究了不同绿豆中胰蛋白酶抑制剂活性及其在高温、酸碱及超声波下绿豆的胰蛋白酶抑制剂稳定性。结果表明, 4个抗豆象绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性均显著高于对照感虫品种, 且均与对照在0.01水平差异极显著, 其中B18活性最高, 高达70.2 TI U g-1, B20和A22活性次之, B24活性最差, 但仍高达55.2 TI U g-1。4个抗豆象绿豆品种在不同温度、不同pH和不同振幅超声波下, 残余活性均比对照高, 且残余活性均随温度升高、温浴时间延长而降低, pH在2~12之间, 随pH值的升高, 残余活性均呈现先升高后降低的趋势, 且pH值为6~8之间残余活性最高, 残余活性也随超声波辐射强度升高、时间延长而降低, 且4个抗虫品种中B18的耐高温性、耐酸碱性和耐辐射性最强, B20次之, B24的耐高温性、耐酸碱性最差, A22耐辐射性最差, 说明在不同温度、pH和超声波处理后, B18、B20是抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性保存最高的2个品种, 应用价值较大。

关键词: 抗豆象绿豆; 胰蛋白酶抑制剂; 活性; 温度; pH; 超声波
Activity and Physico Chemical Properties of Trypsin Inhibitor in Bruchid- Resistant Mung Bean
FAN Yan-Ping1, ZHANG Yao-Wen2, ZHAO Xue-Ying2, ZHANG Xian-Hong1,*
1College of Agriculture, Shanxi Agricultural University, Taigu 030801, China
2Institute of Crop Science, Shanxi Academy of Agricultural Sciences, Taiyuan 030000, China
Fund:The study was supported by the China Agriculture Research System (GARS-08-G11)
Abstract

Taking bruchid-resistant mung bean lines including B18, B20, B24, and A22 as experimental materials, a susceptible variety mung bean Jinlyu 1 as control, the activity of trypsin inhibitor and the stability of mung bean trypsin inhibitor under high temperature, pH and ultrasonic were measured. The trypsin inhibitor activities of four bruchid-resistant mung bean lines were significantly higher than those of control (Jinlyu 1). There were significant differences of trypsin inhibitor activity between four bruchid-resistant mung bean lines and the control at the 1% probability level. Among them, B18 had the highest activity (70.2 TI U g-1), following by B20 and A22, and B24 had the lowest one (55.2 TI U g-1). When treated with temperature, pH and amplitude of ultrasonic, the residual activities of trypsin inhibitor from the four bruchid-resistant mung bean lines were higher than those of control. The residual activities decreased with the increase of temperature and time of warm bath, which enhanced initially and then weakened when pH value was elevating between 2-12, with the highest when pH ranged from six to eight. The residual activities also reduced with the increasing ultrasonic intensity and treatment time. Among the four tested lines, B18 had the highest tolerance to high temperature, high acid and alkali stress, and ultrasonic intensity; B20 had the moderate tolerance, B24 had the lowest tolerance to high temperature, acid and alkali stress, while A22 had the lowest tolerance to ultrasonic treatment. We concluded that among four lines, B18 and B20 have the highest residual activity of bruchid-resistant mung bean trypsin inhibitor under temperature, pH and ultrasonic treatments, being of higher value of its application.

Keyword: Bruchid-resistant mung bean; Trypsin inhibitor; Activity; Temperature; pH; Ultrasonic

胰蛋白酶抑制剂(trypsin inhibitor, TI)普遍存在于种子和块茎等植物的储藏器官中, 在豆类作物种子中含量较高[1, 2, 3]。它能在生物体内与胰蛋白酶结合形成一类不可逆的无酶活性的复合物, 从而抑制生物对蛋白质的消化、吸收和利用。胰蛋白酶抑制剂作为一种抗营养因子, 可与昆虫肠道中的胰蛋白酶结合形成稳定的复合物而影响昆虫对食物的消化和吸收; 同时, 胰蛋白酶抑制剂与胰蛋白酶形成的复合物还可能作为一个负反馈信号抑制昆虫的取食, 这种双重效应有效地降低了害虫对食物蛋白的消化利用[4, 5, 6, 7]。此外, 胰蛋白酶抑制剂还具有抗病毒、抗癌的作用, 据报道, 自豆类中提取的Kunitz型和Bowman-Birk型胰蛋白酶抑制剂可抑制HIV-1病毒增殖的反转录酶的活性, 从而抑制HIV-1病毒的增殖[8]; 自蚕豆中提取的Bowman-Birk型胰蛋白酶抑制剂, 不仅可以抑制HIV-1反转录酶活性, 同时具有通过诱导染色质凝聚和细胞凋亡而抑制HepG2肝肿瘤细胞增殖的能力[9]。此外, 大豆的Bowman-Birk型胰蛋白酶抑制剂对卵巢癌、宫颈癌及肠癌等多种肿瘤表现明显的抗癌活性[10, 11, 12]; 北海道黑豆的Bowman-Birk型胰蛋白酶抑制剂对乳房癌细胞增殖有明显的抑制[13]; 荞麦胰蛋白酶抑制剂可通过诱导实体癌细胞凋亡发挥抗癌作用[14, 15, 16]。因此, 目前胰蛋白酶抑制剂被广泛应用于医药、农业、食品和生物工程等领域[17, 18, 19]。

绿豆胰蛋白酶抑制剂的研究始于20世纪60年代[20, 21], 属Bowman-Birk类抑制剂, 其2个活性中心Lys和Arg可分别抑制胰蛋白酶和胰凝乳蛋白酶的活性[22], 因此被认为是自然界里胰蛋白酶最有效的抑制剂之一[23]。目前, 许多学者已对绿豆胰蛋白酶抑制剂分离纯化技术进行了研究[24, 25, 26, 27, 28], 其LysGP33活性片段抑制人结肠癌SW480细胞的迁移[29]及对Kexin和Furin蛋白前体加工酶的抑制活性也得到了证实[23], 此外, 绿豆胰蛋白酶抑制剂对人肺腺癌A549细胞增殖和细胞凋亡也有明显抑制作用[30], 但对其生物学活性研究较少。抗虫害是胰蛋白酶抑制剂具有的生物功能之一, 那么抗虫绿豆中胰蛋白酶抑制剂活性会不会高于感虫品种, 其活性是否稳定?目前这方面的研究还未见报道。为此本试验以4个不同的抗虫绿豆为材料, 进行了绿豆品种中胰蛋白酶抑制剂活性测定及在高温、酸碱及超声波作用下其稳定性的研究, 旨在为抗虫绿豆资源的开发利用提供理论依据。

1 材料与方法
1.1 供试绿豆

选用高抗豆象绿豆品系A22、B18、B20和B24及普通绿豆品种晋绿1号, 以普通绿豆晋绿1号为对照, 均由山西省农业科学院作物科学研究所提供。

1.2 供试试剂及仪器

胰蛋白酶购自Sigma公司; 苯甲酰-DL-精氨酸-对硝基酰胺盐(BAPNA)、盐酸、Tris碱为分析纯乙酸。

粉碎机购自北京科技有限公司; 恒温水浴锅购自北京永光明医疗仪器厂; 离心机购自美国Sigma公司; 天平购自北京赛多利斯仪器系统有限公司; 酶标仪购自美国DANAHER公司; 摇床购自上海长城生化厂; 超声波处理器购自美国Branson公司; 移液枪购自德国Eppendorf公司。

1.3 胰蛋白酶抑制剂的提取

用多功能食品粉碎机粉碎绿豆并通过孔径140 μ m筛, 称取过筛样品20 g溶于20 mL蒸馏水, 于4℃振荡过夜, 振荡速度为180 r min-1, 以2000 × g离心15 min, 将所得沉淀(i)再次溶于等量蒸馏水重复以上操作, 合并2次上清液为(I), 用磁力搅拌器缓慢搅拌, 缓慢加入研细的无水CaCl2, 使CaCl2最终浓度达到0.0375 mol L-1, 蛋白质形成较大颗粒沉淀后立即停止搅拌, 静置20 min, 5000 × g离心15 min, 得到上清液(II)和沉淀(ii)。将沉淀(ii)用蒸馏水复溶、二次提取后, 同样以5000 × g离心15 min, 得到上清液(III)和沉淀(iii)。重复以上操作得到上清液(IV)和沉淀(iv), 合并上清液备用。

1.4 胰蛋白酶抑制剂活性的测定

取上述提取液0.1 mL加5 mg mL-1胰蛋白酶溶液0.1 mL与0.05 mol L-1 Tris-HCl缓冲液(pH 8.1) 0.6 mL, 混匀后置37℃水浴10 min, 加底物BNPNA 1.0 mL, 于37℃水浴10 min, 最后加30%乙酸0.5 mL终止反应, 410 nm测吸光度, 计算抑制剂的活性[31]。

在上述反应条件下抑制1 mg (1∶ 250)胰蛋白酶活性所需要的抑制剂量为1个抑制剂活性单位(TI U)。

1.5 温度对胰蛋白酶抑制剂活性的影响

取0.5 mL提取液置带螺旋盖的菌种冷冻管中, 加入0.5 mL蒸馏水, 拧紧盖子, 分别在40℃、60℃、80℃、100℃恒温水浴处理30 min和60 min, 取出后立即置冰上冷却15 min, 终止反应后离心, 取上清液按前述方法计算抑制剂的残余活性。

1.6 pH对胰蛋白酶抑制剂活性的影响

取0.05 mol L-1 pH 2、pH 4、pH 6、pH 8、pH 10、pH 12的缓冲液0.5 mL分别于离心管(其中pH 2和pH 4为柠檬酸缓冲液, pH 6、pH 8、pH 10和pH1 2为Tris-HCl缓冲液), 再分别加0.5 mL提取液于每种缓冲液, 混匀后37℃静置8 h。取上清液按前述方法计算抑制剂的残余活性。

1.7 超声波对胰蛋白酶抑制剂活性的影响

用吸管吸取5 mL待测液放入一个特殊的玻璃容器中(能通过循环冷水保持周围温度在25± 3℃, 减少对TI的热效应), 把玻璃容器放进超声波处理器, 使锥形探头伸进样品溶液中。以振幅25%、35%、45%、55%和65%分别处理5、10、15和20 min来检测超声波处理下抑制剂的残余活性[32]。

1.8 数据分析

试验中胰蛋白酶抑制剂活性测定3次重复, 以其平均值± 标准差来表示。采用Microsoft Excel处理数据, 用SPS 16.0软件统计和分析数据。

2 结果与分析
2.1 不同抗豆象绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性比较

由表1可知, 4个抗豆象绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性均显著高于对照, 且与对照在0.01水平差异极显著, 4个抗虫品种间B18分别与A22、B20和B24在0.01水平差异极显著, B20和B24在0.01水平差异极显著, 其中B18活性最高, 达70.2 TI U g-1, 为对照的1.65倍, B20和A22次之, 分别达62.5 TI U g-1和60.1 TI U g-1, 分别是对照的1.47倍和1.41倍, B24活性最低, 为55.2 TI U g-1, 仍为对照的1.30倍, 4个抗虫品种间胰蛋白酶抑制剂活性差异较大, 高低相差1.27倍。

表1 不同抗豆象绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性比较 Table 1 TI activity of different bruchid-resistant mung bean varieties
2.2 温度对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响

由表2可知, 不同温度不同温浴时间对各供试绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响不同, 参试品种的抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性有随温度升高、温浴时间延长而降低的趋势, 在40℃时, 分别温浴30 min、60 min各绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性均在90%以上, 说明低温下温浴时间对残余活性的影响很小, 但随温度升高, 温浴时间延长, 各绿豆品种活性均降低, 而B18、B20在100℃温浴60 min残余活性仍比对照分别高21.0%和14.7%, B24活性最低, 仅比对照高7.5%。在各温度处理下, 抗虫绿豆B18和B20的胰蛋白酶抑制剂均有较高的残余活性, 且均与对照差异显著, 说明B18的耐高温性最强, B20次之, B24最差。各绿豆品种在各温度处理下变异系数在0.035~0.082之间, 其中100℃下温浴30 min变异系数要比其他各处理均大, 说明温度为100℃温浴30 min对各绿豆品种活性的影响较大。同时对测定结果作均数间的多重比较(表3)表明, 在各温度处理下, 4个抗虫品种TI活性均值均高于对照, 且4个抗虫品种之间及与对照之间均在0.01水平差异极显著, B18的TI活性均值明显高于其他3个抗虫品种。而不同温浴时间、不同温度处理下TI活性均值也均在0.01水平差异极显著, 且温浴30 min比温浴60 min TI活性的均值要高, 40℃的温度处理比其他温度处理TI活性的均值也高一些, 说明较短的温浴时间和低温对TI活性的影响较小, 相反较长的温浴时间和高温对TI活性的影响较大。

表2 温度对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响 Table 2 Effect of temperature on TI activity in bruchid-resistant mung bean
表3 对不同绿豆品种和不同温度处理下TI活性作均数间的多重比较 Table 3 Multiple comparisons of TI activity in different mung bean varieties and different temperatures
2.3 pH对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响

表4表明, 在pH 2~12范围内, 参试品种的抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性随pH值的升高, 呈现先升高后降低的趋势, 在各pH处理下, 4个抗虫品种中B18和B20均有较高的残余活性, 且均与对照差异显著, 当pH为2时, 分别比对照高27.0%和17.4%, 此外, B18在pH为12时残余活性为对照的2.81倍, 说明B18耐酸碱性均很强, B20次之, B24最差。当pH值为6~8时, 对供试各绿豆胰蛋白酶抑制剂活性影响较小。供试各绿豆品种在pH 12下变异系数比其他各处理均大, 说明偏碱性环境对各绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性的影响较大。对测定结果作均数间的多重比较(表5)表明, 在各pH处理下, 4个抗虫品种TI活性均值均高于对照, 且4个抗虫品种之间及与对照之间均在0.01水平差异极显著, B18的TI活性均值明显高于其他3个抗虫品种。而不同pH处理之间TI活性均值也均在0.01水平差异极显著, 且pH 6的处理比其他pH处理下TI活性均值要高一些, 而pH 12处理下的TI活性均值最低, 也说明偏中性的pH环境对TI活性的影响较小, 而偏碱性的pH环境对TI活性的影响较大。

表4 pH对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响 Table 4 Effect of pH on TI activity in bruchid-resistant mung bean
表5 对不同绿豆品种和不同pH处理下TI活性作均数间的多重比较 Tab 5 Multiple comparisons of TI activity in different mung bean varieties and different pH values
2.4 超声波钝化对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响

由表6可知, 不同振幅不同处理时间的超声波对各供试绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响不同。参试品种的抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂残余活性有随超声波辐射强度升高、时间延长而降低的趋势, 在较低振幅短时间处理下, 4个抗虫品种均保持较高的残余活性, 说明低振幅对活性的影响较小, 但随振幅增加、处理时间延长, 残余活性均有所降低, 各绿豆品种在各振幅处理下变异系数在0.035~0.133之间, 其中65%的振幅下处理20 min变异系数均大于其他各处理, 说明较高的振幅处理下, 时间越长对各绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性的影响越大, 但B18、B20在65%的振幅下处理20 min, 残余活性仍比对照分别高48.4%和30.2%。在各振幅处理下, B18和B20均有较高的残余活性, 且均与对照有显著差异, 说明B18的耐辐射性最强, B20次之, A22最差。同时对测定结果作均数间的多重比较(表7)表明, 在各振幅处理下, 4个抗虫品种TI活性均值均高于对照, 且4个抗虫品种之间以及与对照之间均在0.01水平差异极显著, B18的TI活性均值明显高于其他3个抗虫品种。而不同振幅、不同辐射时间下TI活性均值也均在α =0.01水平差异极显著, 且5 min的辐射时间比其他辐射时间TI活性均值要高一些, 及25%的振幅处理要比其他振幅处理的TI活性均值高一些, 说明较短的辐射时间和低振幅对TI活性的影响较小, 相反较长的辐射时间和高振幅对TI活性的影响较大。

从表1、表2、表4和表6的分析可知, 参试品种在不同温度、pH和超声波处理后, B18、B20是抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性保存最高的2个品种, 可见抗虫品种B18胰蛋白酶抑制剂的耐高温性、耐酸碱性和耐辐射性均最强, B20次之, B24的耐高温性、耐酸碱性最差, A22耐辐射性最差, 说明B18、B20是生产TI的潜在原料, 即B18、B20中的TI实际应用价值更大。

表6 超声波钝化对抗豆象绿豆胰蛋白酶抑制剂活性的影响 Table 6 Effect of ultrasonic inactivation on TI activity in bruchid-resistant mung bean
表7 对不同绿豆品种和不同振幅处理下TI活性作均数间的多重比较 Table 7 Multiple comparisons of TI activity in different mung bean varieties and different amplitudes
3 讨论

据报道, TI含量与植物品种、生理状态及受病虫侵害程度有一定关系[33], 我国不同产地的26个绿豆品种TI活性为29.0~53.5 TI U g-1 [34]。本试验表明, 4个抗虫绿豆胰蛋白酶抑制剂活性均显著高于感虫品种及江均平的报道结果。研究表明, TI对丝氨酸蛋白酶具有广谱的抑制作用, 可与胰蛋白酶和胰凝乳酶等消化酶结合而使其失活, 从而治疗由于消化酶过多而对胰腺造成损伤的胰腺炎[35]; 此外, 绿豆胰蛋白酶抑制剂可有效抵制人肺腺癌A549细胞增殖和细胞凋亡[30], 其LysGP33活性片段能够有效抑制人结肠癌SW480细胞的迁移[29], 抗虫绿豆B18和B20中TI含量均较高, 因此绿豆B18、B20有望作为生产TI的潜在原料而用于治疗人类疾病。

试验表明, 供试抗虫绿豆B18、B20的TI活性在100℃加热30 min后残余活性可高达85.2%~ 88.5%, 而黑豆的TI活性在同等加热时间内90℃时则完全失活[25], 大豆的TI活性在温度高于80℃活性也急剧下降[36], 可见抗虫绿豆B18、B20较黑豆、大豆的TI活性具有很强的耐热性, 这对于抗虫绿豆B18、B20的TI的开发利用具有非常重要的意义。

据邵彪等[25]报道, 黑豆TI经pH 2~12处理1 h, 活性残存率均在80%以上; 大豆TI活性在pH 2~11条件下保存30 min, 其活性基本没有明显的变化[36]; 苦荞种子在pH 2~6的不同缓冲溶液中放置1 h 后, 其抑制活性可保留80%左右, 在pH 12条件下, 抑制活性只保留约30%[26], 本研究中4个抗豆象绿豆在pH 2~12下保存8 h均有较高的残余活性, 可见抗虫绿豆均具有较高的pH耐受性, 且耐酸性要强于耐碱性。据报道, TI作为一种抗营养因子, 可与昆虫肠道中的胰蛋白酶结合形成稳定的复合物而影响昆虫对食物的消化和吸收[4, 5, 6, 7], 可见抗虫绿豆中TI可适用于肠中不同pH的害虫的防治, 同时也可与不同酸碱性农药混合使用来控制害虫的为害。

超声波辐射对胰蛋白酶抑制剂活性影响的研究较少, Kunitz型大豆胰蛋白酶抑制剂(KSTI)在65%振幅下随处理时间增加残余活性均快速下降[37], 苦荞麦的TI活性随超声波辐射强度升高、时间延长呈现降低的趋势[26], 和本研究的结果基本一致, 但4个抗虫品种在65%振幅下处理20 min残余活性均高于大豆和苦荞麦。

研究表明, TI与内源抗虫物质协调作用可增加植物的抗虫性。目前, 至少有15种不同来源的TI基因转入不同植物, 获得具有不同抗性的转基因植株, 如Hilder等[38]将豇豆TI基因转入烟草中, 获得了高抗棉铃虫、粘虫的转基因植株; 大麦、南瓜、马铃薯、番茄等TI基因转入烟草中获得抗棉铃虫的转基因烟草; 利用大豆Kunitz型TI基因也获得抗棉铃虫的转基因烟草、棉花、马铃薯等[39]。绿豆B18、B20种子中不仅TI活性高, 且耐高温、耐酸碱和耐辐射, 因此如何科学使用抗虫绿豆B18、B20的TI基因需进一步深入研究。

4 结论

4个抗豆象绿豆品种胰蛋白酶抑制剂活性均显著高于对照感虫品种, 且在不同温度、pH和超声波处理后, 残余活性也均比对照感虫品种高, 其中, 抗虫绿豆B18胰蛋白酶抑制剂活性最高且耐高温性、耐酸碱性和耐辐射性均最强, B20次之, 可见绿豆B18、B20有望作为TI的潜在原料用于培育抗虫的转基因植株和治疗人类疾病。

The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。

参考文献
[1] 廖海, 杜林方, 周嘉裕. 植物中蛋白类蛋白酶抑制剂的研究进展. 天然产物研究与开发, 2002, 14(1):80-84
Liao H, Du L F, Zhou J Y. Research progress of protein protease inhibitors in plants. Nat Prod Res Dev, 2002, 14(1):80-84 (in Chinese) [本文引用:1]
[2] 万善霞, 王婉婉, 滑静, 张淑平. 胰蛋白酶抑制剂在不同领域的研究概况. 北京农学院学报, 2003, 18:152-155
Wan S X, Wang W W, Hua J, Zhang S P. Research status of trypsin inhibitor in different fields. J Beijing Agric Coll, 2003, 18:152-155(in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[3] 罗玉娇, 李滨, 舒衡平, 蒋立平. Kunitz型胰蛋白酶抑制剂的研究进展. 中国生化药物杂志, 2012, 33:316-319
Luo Y J, Li B, Shu H P, Jiang L P. Research advances in Kunitz trypsin inhibitor. Chin J Biochem Pharm, 2012, 33:316-319(in Chinese) [本文引用:1]
[4] 吴国昭, 朱克岩, 曾任森. 大豆胰蛋白酶抑制剂对斜纹夜蛾生长发育的影响. 生态环境学报, 2013, 22:1335-1340
Wu G Z, Zhu K Y, Zeng R S. Effect of soybean trypsin inhibitor on the growth and development of Spodoptera litura. Ecol Environl Sci, 2013, 22:1335-1340 (in Chinese) [本文引用:2]
[5] 王荣春, 孙建华, 何述栋, 马莺. 胰蛋白酶抑制剂的结构与功能研究进展. 食品科学, 2013, 34(9):364-368
Wang R C, Sun J H, He S D, Ma Y. Recent advance in research on the structure and function of trypsin inhibitor. Food Sci, 2013, 34(9):364-368 (in Chinese with English abstract) [本文引用:2]
[6] Oliveira A S, Migliolo L, Aquino R O, Ribeiro J K C, Macedo L L P, Andrade L B, Bemquerer M P, Santos E A, Kiyota S, Sales M P. Purification and characterization of a trypsin-papain inhibitor from Pithecelobium dumosum seeds and its vitro effects towards digestive enzymes from insect pest. Plant Physiol Biochem, 2007, 45:858-865 [本文引用:2]
[7] 刘大伟, 陈立杰, 段玉玺. 灰皮支黑豆胰蛋白酶抑制剂基因的克隆及其在胞囊线虫胁迫下的表达分析. 河南农业科学, 2016, 39(4):94-97
Liu D W, Chen L J, Duan Y X. Cloning of soybean Kunitz trypsin inhibitor gene from huipizhiheidou and expression analysis in soybean infected by Heterodera glycines. J Henan Agric Sci, 2016, 39(4):94-97 (in Chinese with English abstract) [本文引用:2]
[8] Ye X Y, Ng T B, Rao P F. A Bowman-Birk-type trypsin-chymotrypsin inhibitor from broad beans. Bichem Biophys Res Commun, 2001, 289:91-96 [本文引用:1]
[9] Evand ro F F, Wong J H, Ng T B. Thermostable Kunitz trypsin inhibitor with cytokine inducing, antitumor and HIV-1 reverse transcriptase inhibitory activities from Korean large black soybeans. J Biosci Bioeng, 2010, 109:211-217 [本文引用:1]
[10] 王长良, 张永忠, 孙志刚. Bowman-Birk型大豆胰蛋白酶抑制剂研究进展. 大豆科学, 2007, 26:757-761
Wang C L, Zhang Y Z, Sun Z G. Progress on the research of Bowman-Birk soybean trypsin inhibitor. Soybean Sci, 2007, 26:757-761 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[11] Kobayashi H, Suzuki M, Kanayama N, Terao T. A soybean Kunitz trypsin inhibitor suppresses ovarian cancer cell invasion by blocking urokinase upregulation. Clin Exp Metastas, 2004, 21:159-166 [本文引用:1]
[12] 张少娟, 薛晓鸥, 刘同祥, 艾浩, 牛建昭. 大豆胰蛋白酶抑制剂对人宫颈癌Hela细胞增殖的影响. 辽宁医学院学报, 2008, 29:106-109
Zhang S J, Xue X O, Liu T X, Ai H, Niu J Z. The effect of soybean typsin inhibitor on proliferation of human Hela cells. J Liaoning Med Univ, 2008, 29:106-109 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[13] Ho V S M, Ng T B. A Bowman-Birk trypsin inhibitor with antiproliferative activity from Hokkaido large black soybeans. J Pept Sci, 2008, 14:278-282 [本文引用:1]
[14] 吴燕子. 重组荞麦胰蛋白酶抑制剂对乳腺癌细胞MCF-7作用的研究. 山西大学硕士学位论文, 山西太原, 2015
Wu Y Z. Study on Effects of Recombinant Buckwheat Trypsin Inhibitor in Breast Cancer Cell Lines MCF-7. MS Thesis of Shanxi University, Taiyuan, China, 2015 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[15] 白崇智, 李玉英, 李芳, 张政, 王转花. 重组荞麦胰蛋白酶抑制剂诱导肝癌细胞H22凋亡的作用及其机制. 细胞生物学杂志, 2009, 31:79-83
Bai C Z, Li Y Y, Li F, Zhang Z, Wang Z H. Effect of recombinant buckwheat trypsin inhibitor on apoptosis of hepatocellular carcinoma cell line H22 and its mechanism. Chin J Cell Biol, 2009, 31:79-83 (in Chinese) [本文引用:1]
[16] 李娇, 崔晓东, 马晓丽, 王转花. 重组荞麦胰蛋白酶抑制剂延长C. elegans寿命的作用机制. 中国生物化学与分子生物学报, 2016, 32:1112-1120
Li J, Cui X D, Ma X L, Wang Z H. Mechanism underlying prolongevity induced by rBTI in Caenorhabditis elegans. Chin J Biochem Mol Biol, 2016, 32:1112-1120 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[17] Sagili R R, Pankiw T, Zhu-Salzman K. Effects of soybean trypsin inhibitor on hypopharyngeal gland protein content, total midgut protease activity and survival of the honey bee (Apis mellifera L. ). J Insect Physiol, 2005, 51:953-957 [本文引用:1]
[18] Zeng R S, Su Y J, Ye M, Xie L J, Chen M, Song Y Y. Plant induced defense and biochemical mechanisms. J South China Agric Univ, 2008, 29:1-6 [本文引用:1]
[19] Zeng R S, Niu G, Wen Z, Schuler M A, Berenbaum M R. Allelochemical induction of cytochrome P450 monooxygenases and amelioration of xenobiotic toxicity in Helicoverpa zea. J Chem Ecol, 2007, 33:449-461 [本文引用:1]
[20] 戚正武, 任梅轩, 屈贤铭, 罗珊珊, 周元聪, 王克夷, 曹天钦. 绿豆胰蛋白酶抑制剂化学与物化特征及其与活力的关系. 中国生理科学会学术会议论文集, 北京, 1964. pp 43-44
Qi Z W, Ren M X, Qu X M, Luo S S, Zhou Y C, Wang K Y, Cao T Q. Characterization of chemical and physicochemical properties of mung bean trypsin inhibitor and its relationship with viability. In:Proceedings of the Chinese Society of Physiological Sciences, Beijing, China, 1964. pp 43-44(in Chinese) [本文引用:1]
[21] 屈贤铭, 罗珊珊, 任梅轩, 戚正武, 曹天钦. 绿豆胰蛋白酶抑制剂的研究:II. 抑制剂A、B组份的关系及其化学结构的特征. 生物化学与生物物理学报, 1964, 4:588-597
Qu X M, Luo S S, Ren M X, Qi Z W, Cao T Q. Studies on inhibitors of mung bean trypsin:II. The relationship between inhibitors, A, B components and their chemical structure characteristics. Acta Biochim Biophy Sin, 1964, 4:588-597 (in Chinese) [本文引用:1]
[22] 谭复隆, 戚正武. 绿豆胰蛋白酶抑制剂两活性区域的拆分. 生理科学, 1982, 2(5):13
Tan F L, Qi Z W. Resolution of two active region of mung bean trypsin inhibitor. Physiol Sci, 1982, 2(5):13 (in Chinese) [本文引用:1]
[23] 曲梅, 韩锦铂, 孟延发. 绿豆胰蛋白酶抑制剂对蛋白质前体加工酶的抑制活性. 第二军医大学学报, 2006, 27:258-262
Qu M, Han J B, Meng Y F. Inhibitory activity of mung bean trypsin inhibitor on protein precursor processing enzymes. Acad J Second Mil Med Univ, 2006, 27:258-262 (in Chinese with English abstract) [本文引用:2]
[24] 赵现明. 豆类胰蛋白酶抑制剂的提取分离及纯化. 哈尔滨工业大学硕士学位论文, 黑龙江哈尔滨, 2013
Zhao X M. Extraction, Isolation and Purification of Trypsin Inhibitors from Leguminosae. MS Thesis of Harbin Institute of Technology, Harbin, China, 2013 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[25] 邵彪, 汪少芸, 饶平凡. 黑豆胰蛋白酶抑制剂的纯化及性质研究. 中国食品学报, 2010, 10(6):47-53
Shao B, Wang S Y, Rao P F. Studies on Purification and characterization of trypsin inhibitor from black soybean. Chin J Food Sci, 2010, 10(6):47-53 (in Chinese with English abstract) [本文引用:3]
[26] 阮景军. 苦荞麦胰蛋白酶抑制剂的分离纯化、基因克隆表达及其抗病虫害研究. 四川农业大学博士学位论文, 四川成都, 2011
Ruan J J. Study on Isolation, Purification, Gene Cloning and Expression of Trypsin Inhibitor of Tartary Buckwheat and Resistance to Diseases and Insect Pest. PhD Dissertation of Sichuan Agricultural University, Chengdu, China, 2011 (in Chinese with English abstract) [本文引用:3]
[27] 王静, 朱庆华, 陈杰. 紫花芸豆胰蛋白酶抑制剂的分离纯化及降糖作用研究. 临床合理用药杂志, 2015, 8(9):126-127
Wang J, Zhu Q H, Chen J. Purification and partial characterization of trypsin inhibitor from Phaseolus vulgaris. J Clinic Ration Use Drugs, 2015, 8(9):126-127 (in Chinese) [本文引用:1]
[28] 阮景军, 唐自钟, 陈惠, 程剑平. 核桃胰蛋白酶抑制剂的纯化及抑制植物病原真菌研究. 西南农业学报, 2016, 29:826-830
Ruan J J, Tang Z Z, Chen H, Cheng J P. Purification of trypsin inhibitor from walnut and its inhibition on plant pathogenic fungi. Southwest China J Agric Sci, 2016, 29:826-830 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[29] 赵亚蕊, 李宗伟, 赵超, 付荣, 王兴华, 李卓玉. 重组绿豆胰蛋白酶抑制剂片段对肠癌细胞SW480迁移的影响. 山西大学学报, 2012, 35:126-129
Zhao Y R, Li Z W, Zhao C, Fu R, Wang X H, Li Z Y. Effect of recombinant mung bean trypsin inhibitor fragment on the migration of SW480 in human colon cancer cells. J Shanxi Univ, 2012, 35:126-129 (in Chinese) [本文引用:2]
[30] 王莎莎, 马岳, 李玉银, 罗深恒, 刁爱坡, 龙民慧. 绿豆胰蛋白酶抑制剂BBI诱导肺腺癌A549细胞凋亡. 华南师范大学学报, 2013, 45(3):91-94
Wang S S, Ma Y, Li Y Y, Luo S H, Diao A P, Long M H. Apoptosis of lung adenocarcinoma A549 cells induced by mung bean trypsin inhibitor BBI. J South China Norm Univ, 2013, 45(3):91-94 (in Chinese) [本文引用:2]
[31] Godbole S, Krishna T, Bhatia C. Purification and characterization of protease inhibitors from pigeon pea (Cajanus cajan (L. ) Millsp) seeds. J Sci Food Agric, 1994, 64:87-93 [本文引用:1]
[32] Huang H, Kwok K C, Liang H H. Inhibitory activity and conformation changes of soybean trypsin inhibitors induced by ultrasound. Ultrason Sonochem, 2008, 15:724-730 [本文引用:1]
[33] EI-Shamei Z, Wu J W, Haard N F. Influence of wound injury on accumulation of proteinase inhibitors in leaf and stem tissues of two processing tomato cultivars. J Food Biochm, 1996, 20(5):155-171 [本文引用:1]
[34] 江均平, 李春红, 张涛, 云冬梅, 杨雪丰. 绿豆胰蛋白酶抑制剂的含量、多型性及稳定性. 食品科学, 2013, 34(11):32-35
Jiang J P, Li C H, Zhang T, Yun D M, Yang X F. Activity, Polymorphism and stability of trypsin inhibitor from mung Beans. Food Sci, 2013, 34(11):32-35 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[35] 赵琳琳. 大豆胰蛋白酶抑制因子对小鼠胰腺结构功能及基因表达的影响. 吉林农业大学硕士学位论文, 吉林长春, 2014
Zhao L L. The Effect of Soybean Trypsin Inhibitor on Structure and Function and Gene Expression Profile in Pancreas of Mice. MS Thesis of Jilin Agricultural University, Changchun, China, 2014 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[36] 张宾. 大豆胰蛋白酶抑制剂的制备、理化性质和抗黄曲霉作用. 中国海洋大学博士学位论文, 山东青岛, 2010
Zhang B. Preparation, Purification and Properties of Soybean Trypsin Inhibitor with Anti-Aspergillus flavus Activity. PhD Dissertation of Ocean University of China, Qingdao, China, 2010 (in Chinese with English abstract) [本文引用:2]
[37] 黄惠华, 粱汉华, 郭乾初. 超声波对大豆胰蛋白酶抑制剂活性及二级结构的影响. 食品科学, 2004, 25(3):29-33
Huang H H, Liang H H, Guo Q C. Different effects of ultrasound on two types of soybean trypsin inhibitors in activity and structures. Food Sci, 2004, 25(3):29-33 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]
[38] Hilder V A, Gatehouse A M R, Sheerman S E, Barker R F, Boulter D. A novel mechanism of insect resistance engineered into tobacco. Nature, 1987, 300:160-163 [本文引用:1]
[39] 柳武革, 薛庆中. 蛋白酶抑制剂及其在抗虫基因工程中的应用. 生物技术通报, 2000, (1):20-25
Liu W G, Xue Q Z. Proteinase inhibitors and their application in insect-resistant gene engineering. Biotechnol Inform, 2000, (1):20-25 (in Chinese with English abstract) [本文引用:1]